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    焦化廢水活性污泥中降解硫氰化物細(xì)菌研究

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    2017-03-17 14:39:08   來源:    點(diǎn)擊:

    焦化廢水是煤在高溫干餾過程中以及煤氣凈化、 化學(xué)產(chǎn)品精制過程中產(chǎn)生的高濃度、 難降解有機(jī)工業(yè)廢水,酚類是其主要有機(jī)組分,其他的有機(jī)物包括多環(huán)芳烴和一些含有氮、 氧和硫的雜環(huán)化合物,無機(jī)組分則包括氰化物、 硫氰化物(SCN-)和氨氮等[1, 2]. 酚類、 硫氰化物和氰化物是焦化廢水中COD 的3 大主要來源,SCN-在焦化廢水中的濃度為200~1000 mg·L-1,是僅次于酚類的第2 大COD來源; 由于SCN-的毒性相對較低,其在焦化廢水處理過程中受到的重視程度遠(yuǎn)不如揮發(fā)酚和氰化物等污染物[3, 4]. SCN-是苯酚和氨生物降解的抑制劑[5, 6],對硝化過程有抑制作用[4]. 同時,SCN-的轉(zhuǎn)化需要大量的氧化劑或溶解氧,且可能生成CN-中間產(chǎn)物[7],因此,SCN-不僅對焦化廢水的主要控制指標(biāo)COD、 色度及NH4+-N等有直接或間接作用,還會使廢水毒性增高. 因此,焦化廢水中的SCN-必須徹底有效去除,以消除廢水對生態(tài)環(huán)境帶來的潛在威脅和危害.

      焦化廢水的處理過程主要包括脫酚、 蒸氨、 脫氰、 除油、 生化處理、 混凝沉淀和后續(xù)高級氧化等. 其中生化處理是焦化廢水處理的主體和核心,如缺氧-好氧、 厭氧-缺氧-好氧和序批式活性污泥法等[8]. 污泥的細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)在廢水的生物處理過程中起著至關(guān)重要的作用,決定廢水中污染物的去除效率[9, 10]. Zhu等[11]利用454高通量測序研究了焦化廢水厭氧/缺氧/沸石生物濾池-膜生物反應(yīng)器中微生物的群落結(jié)構(gòu)組成和動態(tài)變化,結(jié)果表明沸石材料可以改變微生物菌群結(jié)構(gòu),促進(jìn)了一些新類群的出現(xiàn),使氨氧化菌和亞硝化細(xì)菌逐漸成為優(yōu)勢菌. 曹軍偉等[12]通過 PCR 和 16S r DNA 序列分析技術(shù),在焦化活性污泥中鑒定了20個屬的28種酚類化合物降解菌. 喬琳等[13]通過末端限制性片段長度多態(tài)性(T-RFLP) 分析手段,探討了固定化生物強(qiáng)化與對照反應(yīng)器中微生物群落結(jié)構(gòu)的動態(tài)變化,表明在吡啶初始濃度為 782.4~2934 mg·L-1時,投加的菌株P(guān)aracoccus sp.KT-5可以作為優(yōu)勢菌始終存在于反應(yīng)器中. Huddy等[14]利用基因克隆文庫分析表明Thiobacillus 是ASTERTM生物處理系統(tǒng)中SCN-降解的優(yōu)勢菌. Ryu等[15]利用高通量解析了SCN-降解過程中的藻類和細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)的動態(tài)變化,發(fā)現(xiàn)Thiobacillus 細(xì)菌和Micractinium 藻類為優(yōu)勢生物. 焦化廢水處理系統(tǒng)功能的穩(wěn)定性主要依靠優(yōu)勢微生物的活性和多樣化的群落結(jié)構(gòu)間的相互關(guān)系[16],SCN-是焦化廢水中COD的主要來源之一,其好氧段生物去除效果影響廢水的達(dá)標(biāo)排放,而降解SCN-的細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)依然處于“黑匣子狀態(tài)”. 對焦化廢水活性污泥中降解SCN-的微生物進(jìn)行分子生態(tài)學(xué)研究,有助于探討焦化廢水處理的工藝改進(jìn)、 動態(tài)監(jiān)控和優(yōu)化控制.

      本研究利用KSCN為唯一碳源和能源,采用逐步提高其濃度的方法富集焦化廢水活性污泥中的SCN-降解菌群,并利用454測序分析其細(xì)菌多樣性以及在不同SCN-濃度條件下群落結(jié)構(gòu)的演替變化,以期為焦化廢水處理工藝的穩(wěn)定運(yùn)行提供理論基礎(chǔ).

      1 材料與方法

      1.1 主要試劑和材料

      生工Ezup柱式土壤基因組DNA抽提試劑盒,KSCN(分析純); 接種污泥采集自鞍山某焦化廠好氧池.

      1.2 污泥的馴化培養(yǎng)

      取適量經(jīng)沉淀濃縮的新鮮活性污泥于有機(jī)玻璃反應(yīng)器中,加入用自來水配置的濃度為100 mg·L-1的KSCN水溶液,使其污泥濃度為3~5 mg·L-1,在溫度為31℃條件下充分曝氣(DO 4.0~7.0 mg·L-1),定時取樣檢測活性污泥降解SCN-的能力,同時設(shè)置未加污泥的污水做對照組. 活性污泥可以在24 h內(nèi)可完全降解100 mg·L-1的SCN-,靜置1 h后去除上清液,加入新鮮的100 mg·L-1的KSCN水溶液在相同條件下繼續(xù)培養(yǎng)24 h(1號樣品),去除上清液后加入濃度為300 mg·L-1的KSCN水溶液,培養(yǎng)2 d(一個周期)更換新的KSCN水溶液,8個周期后(2號樣品)加入濃度為600 mg·L-1 的KSCN水溶液繼續(xù)馴化培養(yǎng),6個周期后結(jié)束培養(yǎng)(3號樣品).

      1.3 活性污泥對SCN-濃度的生物降解

      分別取適量經(jīng)沉淀濃縮的新鮮活性污泥和100~600 mg·L-1 KSCN馴化富集的活性污泥于有機(jī)玻璃反應(yīng)器中,加入用自來水配置的濃度分別為100、 300、 600 mg·L-1的KSCN水溶液,使其污泥濃度為3~5 mg·L-1,在溫度為31℃條件下充分曝氣定時取樣,檢測活性污泥對SCN-的降解能力. SCN-的測定方法參照文獻(xiàn)[17].

      1.4 細(xì)菌多樣性分析

      1.4.1 污泥樣品預(yù)處理

      將不同周期培養(yǎng)后的活性污泥樣品置于1、 2和3離心管中離心棄上清,用已滅菌的生理鹽水洗滌 2~3次,用于后續(xù)污泥細(xì)菌總DNA的提取、 PCR和測序分析.

      1.4.2 污泥細(xì)菌總DNA 提取、 PCR和16S rDNA測序

      污泥細(xì)菌總DNA 提取、 PCR和16S rDNA測序由上海生工公司完成. 細(xì)菌總DNA 提取按照生工Ezup柱式土壤基因組DNA抽提試劑盒進(jìn)行. PCR擴(kuò)增引物: 341F CCTACGGGNGGCWGCAG 和805R GACTACHVGGGTATCTAATCC[18],擴(kuò)增區(qū)域V3-V4. 反應(yīng)條件94℃ 30 s; 94℃ 20 s,45℃ 20 s,65℃ 60 s,5個循環(huán); 94℃ 20 s,60℃ 20 s,72℃ 20 s,20個循環(huán); 72℃ 5 min,10℃. 50 μL反應(yīng)體系,50 μL PCR反應(yīng)體系及10×PCR buffer 5 μL,dNTP (10 mmol·L-1) 0.5 μL,Genomic DNA10 ng,引物F(50 μmol·L-1) 1 μL,引物R (50 μmol·L-1) 1 μL,Plantium Taq (5 U·μL-1) 0.5 μL,水42 μL. 各樣品PCR 擴(kuò)增后,利用Roche 454 GSFLX+測序儀上機(jī)測序.

      1.4.3 序列數(shù)據(jù)處理

      原始序列數(shù)據(jù)通過質(zhì)量控制,舍棄低質(zhì)量序列之后序列長度大部分分布在400~600 bp之間,平均長度均在440 bp以上,各樣本序列數(shù)均在500 bp以上. 物種分類采用RDP classifier軟件. 按照相似度為97%的標(biāo)準(zhǔn)將操作分類單位(operational taxonomic units OTU)進(jìn)行分類[16],運(yùn)行軟件mothur(http://www.mothur.org/)中的summary.single 命令,計(jì)算常用的生物多樣性指數(shù),如豐富度指數(shù)(Chao/ACE指數(shù))、 覆蓋率指數(shù)(good's coverage)和多樣性指數(shù)(Shannon指數(shù)).

      2 結(jié)果與討論

      2.1 活性污泥對SCN-的生物降解

      硫氰化物是焦化原水中含量最高的無機(jī)污染物之一[4],而在曝氣池中SCN-的濃度約100mg·L-1. SCN-的組成元素 S、 C和N 是生物生長所需的營養(yǎng)元素,在好氧條件下微生物可以SCN-作為其碳源、 氮源或硫源進(jìn)行生長,并形成SO42-、 CO2和NH4+代謝產(chǎn)物[15]. 結(jié)果表明(如圖 1),原始污泥和馴化污泥對SCN-的降解速率隨著SCN-初始濃度的升高而增大,馴化污泥的降解能力大于原始污泥,初始SCN-濃度為600 mg·L-1時,原始污泥的降解速率為14.255 mg·(g·h)-1,而馴化污泥的降解速率為15.978 mg·(g·h)-1,表明污泥馴化有利于SCN-降解菌群的富集和降解能力的提高. 解析不同SCN-濃度下馴化污泥的細(xì)菌種群結(jié)構(gòu)有助于揭示污泥的降解機(jī)制和降解效率.

      圖 1 活性污泥中SCN-的的降解速率

      2.2 活性污泥的細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)多樣性

      為了分析降解SCN-的細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)豐富度,在97%相似水平上計(jì)算了常見的多樣性指數(shù). 污泥細(xì)菌多樣性指數(shù)如表 1所示,覆蓋率指數(shù)是樣品的測序深度也表明樣品的覆蓋率,3個樣品的覆蓋率分別是0.97、 0.98和0.98,表明絕大部分的細(xì)菌種群都被檢測出來. 隨SCN-馴化濃度的升高,活性污泥中的細(xì)菌多樣指數(shù)隨之減少,如100 mg·L-1 SCN-的活性污泥經(jīng)過300 mg·L-1和600 mg·L-1的SCN-培養(yǎng)馴化后,生物分類單元(OTUs)從949分別降為749和702,香農(nóng)指數(shù)也從4.42分別減為3.49和3.28,這表明細(xì)菌多樣性及結(jié)構(gòu)在不同濃度SCN-的培養(yǎng)下發(fā)生了改變,高濃度的SCN-對群落結(jié)構(gòu)產(chǎn)生脅迫壓力,使其生物多樣性減少. 圖 2同樣顯示不同SCN-濃度對生物群落結(jié)構(gòu)的影響,圖 2(a)生物群落豐富度稀疏曲線顯示600 mg·L-1 SCN-的OTUs最少,100 mg·L-1 SCN-的OTUs最多,說明SCN-濃度越大,細(xì)菌多樣性越少. 相似的結(jié)果也通過聚類分析圖 2(b)得以闡明,聚類熱圖采用樣本間unifrac 距離矩陣?yán)L制,顏色塊代表距離值,顏色越紅表示樣本間距離越近,相似度越高,越藍(lán)則距離越遠(yuǎn); 100 mg·L-1和300mg·L-1 SCN-培養(yǎng)過的生物群落聚類在一起,且距離較近,說明細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)經(jīng)演替變化可以適應(yīng)不同的SCN-濃度環(huán)境,SCN-濃度越高對生物群落的脅迫壓力越大,細(xì)菌種群差異越大.

      表 1 細(xì)菌群落多樣性指數(shù)

      圖 2 細(xì)菌群落豐富度稀疏曲線和聚類分析

      不同濃度的SCN-對活性污泥生物群落結(jié)構(gòu)產(chǎn)生的影響不同,污泥生物群落維恩圖(圖 3)表明3個污泥樣品共享部分OTUs占整個OTUs的13%,這部分微生物群落結(jié)構(gòu)受SCN-濃度的波動干擾小,推測其對硫氰化的耐受性高,其中部分細(xì)菌菌群可能是SCN-降解菌群,可以SCN-為唯一碳源、 硫源和能源; 另一部分菌群可能與污泥的穩(wěn)定性有關(guān). 此外,圖 3表明300mg·L-1和600 mg·L-1 SCN-培養(yǎng)的污泥共享的OTUs為106,300 mg·L-1 SCN-和原始污泥共享的OTUs為104,而600 mg·L-1SCN-和原始污泥共享的OTUs為51,同樣說明高濃度SCN-馴化污泥與原始污泥的細(xì)菌群落多樣性相差較大.

      圖 3 細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)維恩圖

      2.3 細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)組成和豐度

      為了解析細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)組成和豐度,對質(zhì)控后的序列采用RDP classifier軟件進(jìn)行物種分類,圖 4、 表 2和圖 5分別為細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)在門、 目和屬水平上的組成和豐度. 污泥的優(yōu)勢門(圖 4)主要有Proteobacteria、 Bacteroidetes、 Chlorobi、 Planctomycetes、 Acidobacteria、 Nitrospira、 Firmicutes、 未分類的和微小菌群,與Ma等[16]的研究結(jié)果基本一致. Proteobacteria在焦化廢水中占主導(dǎo)地位[11],其在3個污泥樣品中的豐度也最高,分別為47.47%、 50.28%和38.65%. Bacteroidetes為第二優(yōu)勢門,豐度分別為36.78%、 31.57%和46.11%,Acidobacteria在3個污泥樣品中的豐度分別為2.62%、 7.33%和7.99%. Bacteroidetes 和 Actinobacteria為好氧污泥中的優(yōu)勢門,Mclellan等[19]發(fā)現(xiàn)二者也為污水處理廠進(jìn)水中的優(yōu)勢細(xì)菌. Chlorobi的豐度分別為0.21%、 1.65%和3.19%. Firmicutes在3個污泥樣品中的豐度分別為4.04%、 0.35%和0.25%,而在厭氧污泥中的豐度高達(dá)92.3%[20]. Nitrospira為亞硝化細(xì)菌,在3個活性污泥中的豐度低于1%. 各種分子指紋圖譜的方法已被開發(fā)用于評估微生物群落結(jié)構(gòu),而高通量測序可以檢測更多未知和低豐度的序列[21]. 雖然90%以上的細(xì)菌門類在3個污泥樣品中被鑒定,然而無法分類或者未知的門類在3個污泥樣品中的豐度分別為6.54%、 7.69%和2.79%.

      圖 4 細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)門水平上的組成

      表 2 細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)目水平上的組成

      圖 5 細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)屬水平上的分布

      目水平上分類表 2(每種目的豐度至少在一個樣品中不小于1%)表明: 3個污泥樣品的優(yōu)勢目均為Burkholderiales、 Sphingobacteriales 和Xanthomonadales. Sphingobacteriales 在3個污泥樣品中的豐度分別為32.85%、 29.5%和45.08%,Xanthomonadales的豐度分別為3.8%、 18.5%和14.48%,而Burkholderiales的豐度分別為13.3%、 8.95%和11.92%. Burkholderiales可以降解烴類物質(zhì),是芳烴污染的地表水中的優(yōu)勢目[22],可降解焦化廢水中的苯酚和PAHs(芘)[23, 24]. Rhodospirillales、 Sphingomonadales、 Clostridiales、 Parvularculales、 Rhodobacterales和Myxococcales等是3個污泥樣品所共享的目,雖然各自的豐度不同,但表明其對不同SCN-濃度脅迫下有一定的適應(yīng)性,也說明群落結(jié)構(gòu)可通過自身的調(diào)整以適應(yīng)不同的SCN-濃度環(huán)境.

      細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)在屬水平上的組成和豐度(每種屬的豐度至少在一個樣品中不小于1%)表明(圖 5): 3個污泥主要的屬為20個,不同屬在不同污泥樣品中的豐度不同,有些菌的豐度會隨SCN-濃度的升高而提高,有些菌株的豐度會隨SCN-濃度的升高而降低,結(jié)果類似于門和目分類得到的結(jié)論,進(jìn)一步說明細(xì)菌種群對不同SCN-濃度脅迫下有一定的適應(yīng)性,群落結(jié)構(gòu)可以通過自身的組成變化適應(yīng)不同的SCN-濃度環(huán)境. Flavisolibacter、 Ferruginibacter、 Caldimonas、 Steroidobacter、 Thiobacillus和Gp4,為100 mg·L-1 SCN-培養(yǎng)的污泥樣品中主要的屬,F(xiàn)lavisolibacter、 Thermomonas、 Thiobacillus、 Gp4、 Steroidobacter和Comamonas,為300 mg·L-1 SCN-培養(yǎng)的污泥樣品中主要的屬,而600 mg·L-1 SCN-培養(yǎng)的污泥樣品中主要的屬為Flavisolibacter、 Thermomonas、 Gp4、 Thiomonas、 Sphingopyxis和Ignavibacterium. Flavisolibacter可能參與聚羥基脂肪酸酯的合成[25],而Thermomonas在50℃生長的能力有助于細(xì)菌細(xì)胞壁組分的修飾,如蛋白質(zhì)和(糖)脂質(zhì)的化學(xué)修飾[26],自養(yǎng)微生物Thiobacillus 和Thiomonas可利用H2S作為能源生長[27]. 焦化廢水中分離出Thiobacillus 和Acremonium菌株能以SCN-為唯一碳源和能源生長[28, 29],本研究未發(fā)現(xiàn)Acremonium的存在. Thiobacillus普遍存在于含SCN-的廢水處理系統(tǒng)中,可有效降解SCN- [11],Thiobacillus為100 mg·L-1和300 mg·L-1 SCN-培養(yǎng)的污泥樣品中的優(yōu)勢菌,豐度分別為3.07%和8.63%,而在600 mg·L-1 SCN-培養(yǎng)的污泥樣品中的豐度僅為0.27%,表明在SCN-濃度<300 mg·L-1時Thiobacillus可能是SCN-主要的降解菌,然而SCN-濃度>300 mg·L-1時,可能有其他菌群參與SCN-的降解,如Arthrobacter、 Bacillus、 Escherichia、 Klebsiella、 Methylobacterium、 Ralstonia和Pseudomonas為SCN-降解菌[30],除Escherichia和Methylobacterium外,這些SCN-降解菌在本實(shí)驗(yàn)中均已經(jīng)檢測出來,然而其豐度很低,推測這些低豐度的SCN-降解菌可能在高濃度SCN-下發(fā)揮協(xié)同降解作用. 另外,不同的細(xì)菌具有不同的污染物降解功能,同一種細(xì)菌也可具有降解多種不同污染物的功能,如Comamonas菌可降解酚類、 PAHs和雜環(huán)類物質(zhì)(如吲哚、 喹啉)等[16]; Thiobacillus不僅能降解SCN-,還具有很強(qiáng)的反硝化能力[31]; Pseudomonas可降解SCN-、 酚類化合物、 苯、 甲苯和PAHs等,同時具有硝化和反硝化的能力[32~35]. 污泥是一個復(fù)雜的微生物群體,焦化廢水中SCN-的降解可能是多種菌群共同作用的結(jié)果,菌群間復(fù)雜的相互作用關(guān)系還有待進(jìn)一步研究.

      3 結(jié)論

      (1) 活性污泥經(jīng)300~600 mg·L-1 SCN-的馴化后,其SCN-的降解能力提高,細(xì)菌多樣性隨SCN-濃度升高降低.

      (2) 活性污泥細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)組成中的優(yōu)勢門為Proteobacteria和Bacteroidetes,優(yōu)勢目為Burkholderiales、 Sphingobacteriales 和Xanthomonadales,F(xiàn)lavisolibacter是系統(tǒng)中含量最高的屬,Thiobacillus是<300 mg·L-1 SCN-焦化廢水中主要的SCN-降解菌,在600 mg·L-1SCN-高濃度時低豐度的SCN-降解菌群可能發(fā)揮協(xié)同降解作用.

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